蛋白質免疫印跡法實驗操作

Western Blot印跡技術 根據上海恒遠了解。1975，Edwen Southern提出分子印跡概念。 概念：將存在于凝膠中的生物大分子轉移（印跡）于固定化介質上并加以檢測分析的技術。目前主要應用于DNA,RNA，蛋白質的檢測。 蛋白質免疫印跡法 免疫印跡法 (Western blotting) 是一種將高分辨率凝膠電泳和免疫化學分析技術相結合的雜交技術。免疫印跡法具有分析容量大、敏感度高、特異性強等優點，是檢測蛋白質特性、表達與分布的一種zui常用的方法，如組織抗原的定性定量檢測、多肽分子的質量測定及病毒的抗體或抗原檢測等。 免疫印跡法(immunobiotting test,IBT)亦稱酶聯免疫電轉移印斑法(enzyme linked immunoelectrotransfer blot,EITB),因與Southern早先建立的檢測核酸的印跡方法 Southern blot 相類似，亦被稱為Western-blot. 應用 1 檢測樣品中特異蛋白存在與否 2 細胞中特異蛋白的半定量分析 3 蛋白質分子相互作用的研究 試劑準備 1、SDS-PAGE試劑：見電泳實驗。 2、勻漿緩沖液：1.0M Tris-HCl(pH 6.8)1.Oml；10%SDS 6.0ml；β-巰基乙醇 0.2ml；ddH2O 2.8ml。 3、轉膜緩沖液：甘氨酸 2.9g；Tris 5.8g；SDS 0.37g；甲醇200ml；加ddH2O定容至1000ml。 4、0.01M PBS(pH7.4）：NaCl 8.0g；KCl 0.2g；Na2HPO4 1.44g；KH2PO4 0.24g；加ddH2O至1000ml。 5、膜染色液：考馬斯亮蘭 0.2g；甲醇80ml；乙酸2ml；ddH2O118 ml。包被液（5%脫脂奶粉，現配）：脫脂奶粉1.0g 溶于20ml的0.01M PBS中。 6、顯色液：DAB 6.0mg；0.01M PBS 10.0ml；硫酸鎳胺 0.1ml；H202 1.0μl。 操作步驟 一蛋白質樣品獲得：細菌誘導表達后，可通過電泳上樣緩沖液直接裂解細胞，真核細胞加勻漿緩沖液，機械或超聲波室溫勻漿0.5-1min。然后4℃，13,000g離心15min。取上清液作為樣品。 二電泳：制備電泳凝膠，進行SDS-PAGE。 三轉移：（半干式轉移） 1、電泳結束后將膠條割至合適大小，用轉膜緩沖液平衡，5min×3次。 2、膜處理：預先裁好與膠條同樣大小的濾紙和NC膜，浸入轉膜緩沖液中10min。 3、轉膜：轉膜裝置從下至上依次按陽極碳板、24層濾紙、NC膜、凝膠、24層濾紙、陰極碳板的順序放好，濾紙、凝膠、NC膜對齊，每一步去除氣泡，上壓500g重物，將碳板上多余的液體吸干。接通電源，恒流1mA/cm2，轉移1.5hr。轉移結束后，斷開電源將膜取出，割取待測膜條做免疫印跡。將有蛋白標準的條帶染色，放入膜染色液中50s后，在50%甲醇中多次脫色，至背景清晰，然后用雙蒸水洗，風干夾于兩層濾紙中保存，留與顯色結果作對比。 四免疫反應： 1、用0.01M PBS洗膜，5min ×3次。 2、加入包被液，平穩搖動，室溫2hr。 3、棄包被液，用0.01M PBS洗膜，5min×3次。 4、加入一抗（按合適稀釋比例用0.01M PBS稀釋，液體必須覆蓋膜的全部），4℃ 放置12hr以上。陰性對照，以1%BSA取代一抗，其余步驟與實驗組相同。 5、棄一抗和1%BSA，用0.01M PBS分別洗膜，5min×4次。 6、加入辣根過氧化物酶偶聯的二抗（按合適稀釋比例用0.01M PBS稀釋），平穩搖動，室溫2hr。 7、棄二抗，用0.01M PBS洗膜，5min×4次。 8、加入顯色液，避光顯色至出現條帶時放入雙蒸水中終止反應。 實驗操作 1 細胞裂解物的準備； 2 細胞裂解物的蛋白定量； 3 細胞裂解物的SDS-PAGE； 4 蛋白質的轉移； 6 目的蛋白質的檢測。 免疫印跡只能檢測目的蛋白的相對含量 測定相對含量時，需要內參照 選擇合適的反應條件：SDS-PAGE膠濃度；轉移膜的選擇；轉移時間的選擇 注意電極的正負極 抗體反應時，注意驅除反應袋內氣泡 操作要輕柔。